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入-,以维持-状态。慢性实验预备手术的过程中,仍用-口罩给药,而在一般急性使用,-后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接-瓶继续给药。在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止-。万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。2. 苯巴比妥钠 此药作用持久,应用方便,在普通-用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为:狗腹腔注射80~100mg/kg体重,静脉注射70~120mg/kg体重( 一般每公斤体重给70~80mg即可-,但有的动物要100~120mg才能-,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150~200mg/kg体重。3. 戊巴比妥钠 此药-时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用,药品价格也很便宜。用时配成1~3%生理盐水溶液,必要时可加温溶解, 配好的药液在常温下放置1~2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入-期,使用剂量及方法为:狗、猫、兔静脉注射30~35mg/kg体重,腹腔注射40~45mg/kg体重。 4. 硫喷妥钠 为-粉末,有硫臭,易吸水。其水溶液不稳定,故必须现用现配,常用浓度为1~5%。此药作静脉注射时,由于药液迅速进入脑组织,故诱导快,动物很快被-。但苏醒也很快,一次给药的-时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中,可重复注射,以维持一定的-深度。此药对胃肠道无副作用,但对呼吸有一定抑制作用,由于其抑制交感神经较副交感神经为强,常有喉头痉挛,因此注射时速度必须缓慢。实验剂量和方法:狗静脉注射20~25mg/kg体重;兔静脉注射7~10mg/kg体重。静脉注射速度以15秒钟注射2ml左右进行。小鼠1%溶液腹腔注射0.1~0.3ml/只;大鼠0.6~0.8ml/只。5. 巴比妥钠 使用剂量及方法:狗静脉注射225mg/kg体重;兔腹腔注射200mg/kg体重;鼠皮-射200mg/kg体重。6. 氨基甲酸乙酯 此药是比较温和的-药,安全度大。多数实验动物都可使用,更适合于小动物。一般用作基础-,如使用全部过程都用此-时,动物保温尤为重要。使用时常配成20~25%水溶液,狗、兔静脉、腹腔注射0.75~1g/kg体重。但在作静脉注射时必须溶在生理盐水中,配成5%或10%溶液, 及每公斤体重注射10~20ml。鼠1.5~2g/kg体重,由腹腔注射。以上-药种类虽较多,但各种动物使用的种类多有所侧重。如做慢性实验的动物常用-吸入-(用吗啡和阿托品作基础-);急性动物实验对狗、猫和大鼠常用戊巴比妥钠-;对家兔和青蛙、蟾蜍常用氨基甲酸乙酯;对大鼠和小鼠常用硫喷妥钠或氨基甲酸乙酯-。二、-方法(一)全身-:-药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失,全身不感疼痛,肌肉松弛和反射抑制等现象,这种方法称全身-。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当-药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒,不留后遗症。1. 吸入-法 -药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入而产生-者,称吸入-,常用-作-药。吸入法对多数动物有良好的-效果,其优点是易于调节-的深度和较快的终止-,缺点是中、小型动物较适用,对大型动物如狗的吸入-操作复杂,通常不用。具体方法是:使用--兔及大小鼠时,可将动物放入玻璃-箱内,把装有浸润-棉球的小烧杯放入-箱,然后观察动物。开始动物自主活动,不久动物出现异常兴奋,不停地挣扎,随后排出大小便。渐渐地动物由兴奋转为抑制,倒下不动,呼吸变慢。如动物四肢紧张度明显减低,角膜反射迟钝,皮肤痛觉消失,则表示动物已进入-,可行手术和操作。在实验过程中应随时观察动物的变化,必要时把-烧杯放在动物鼻部,以维持-的时间与深度。2. 注射-法 常用的-药有戊巴比妥钠、硫喷妥钠、氨基甲酸乙酯等。大、小鼠和豚鼠常采用腹腔注射法进行全身-。狗、兔等动物既可腹腔注射给药,也可静脉注射给药。在-兴奋期出现时,动物挣扎不安,为防止注射针滑脱,常用吸入-法进行诱导,待动物安静后再行腹腔或静脉穿刺给药-。在注射-药物时,先用-药总量的三分之二,密切观察动物生命体征的变化,如已达到所需-的程度,余下的-药则不用,避免-过深抑制延脑呼吸中枢导致动物死亡。(二)动物局部-方法:用局部-药阻滞周围神经末梢或神经干、神经节、神经丛的冲动传导,产生局部性的-区,称为局部-。其特点是动物保持清醒,对重要器官功能干扰轻微,-并发症少,是一种比较安全的-方法。适用于大中型动物各种短时间内的实验。局部-操作方法很多,可分为表面-、局部浸润-、区域阻滞-以及神经干(丛)阻滞-。1. 表面- 利用局部-药的组织穿透作用,透过粘膜,阻滞表面的神经末梢,称表面-。在口腔及鼻腔粘膜、眼结膜、尿道等部位手术时,常把-药涂敷、滴入、喷于表面上,或尿道灌注给药,使之-。2. 区域阻滞-:在手术区四周和底部注射-药阻断疼痛的向心传导,称区域阻断-。常用药为普鲁卡因。3. 神经干(丛)阻滞-:在神经干(丛)的周围注射-药,阻滞其传导,使其所支配的区域无疼痛,称神经干(丛)阻滞-。常用药为利多卡因。4. 局部浸润-:沿手术切口逐层注射-药,靠药液的张力弥散,浸入组织,-感觉神经末梢,称局部浸润-。常用药为普鲁卡因。在施行局部浸润-时,先固定好动物,用0.5~1%盐酸普鲁卡因皮内注射,使局部皮肤表面呈现一桔皮样隆起,称皮丘,然后从皮丘进针,向皮下分层注射,在扩大浸润范围时,针尖应从已浸润过的部位刺入,直至要求-区域的皮肤都浸润为止。每次注射时,必须先抽注射器,以免将-药注入血管内引起中毒反应。 三、使用全身-剂的注意事项给动物施行-术时,一定要注意方法的可靠性,根据不同的动物选择合适的方法,特别是较贵重的大型动物。1. -剂的用量,除参照一般标准外,还应考虑个体对药物的耐受性不同,而且体重与所需剂量的关系也并不是绝对成正比的。一般说,衰弱和过胖的动物,其单位体重所需剂量较小,在使用-剂过程中,随时检查动物的反应情况,尤其是采用静脉注射,绝不可将按体重计算出的用量匆忙进行注射。2. 动物在-期体温容易下降,要采取保温措施。3. 静脉注射必须缓慢,同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时,应立即停止注射。配制的药液浓度要适中不可过高,以免-过急;但也不能过低,以减少注入溶液的体积。4. 作慢性实验时,在寒冷冬季,-剂在注射前应加热至动物体温水平。四、实验动物用药量的确定及计算方法(一)动物给药量的确定观察一种药物对实验动物的作用时,一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量:1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量,或取致死量的若干分之一作为应用剂量,一般可取1/10~1/5。2. 植物药粗制剂的剂量多按生药折算。3. 化学药品可参考化学结构相似的已知药物, 特别是化学结构和作用都相似的剂量。4. 确定剂量后,如第一次用药的作用不明显,动物也没有中毒的表现,可以加大剂量再次实验。如出现中毒现象,作用也明显,则应降低剂量再次实验。在一般情况下,在适宜的剂量范围内,药物的作用常随剂量的加大而增强。所以有条件时,最好同时用几个剂量作实验,以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时,则更应慎重分析。5. 用大动物进行实验时,防止动物中毒死亡,开始的剂量可采用鼠类的1/15~1/2,以后可根据动物的反应调整剂量。6. 确定动物给药剂量时,要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。 一般说确定的给药剂量是指成年动物的,如是幼龄动物,剂量应减小。如以狗为例:6 个月以上的狗给药剂量为1份时,3~6个月的给1/2份, 45~89日的给1/4份,20~44日的给1/8 份,10~19日的给1/16份。7. 确定动物给药剂量时,要考虑因给药途径不同,所用剂量也不同。 以口服量为100时,皮-射量为30~50,肌肉注射量为20~30,静脉注射量为25。(二)人与动物的用药量换算方法人与动物对同一药物耐受性不同,一般动物的耐受性要比人大,单位体重的用药量动物比人要高。必须将人的用药量换算成动物的用药量。一般可按下列比例换算:人用药量: 1小鼠、大鼠: 50~100兔、豚鼠: 15~20狗、猫: 5~10以上系按单位体重口服用药量换算。如给药途径为静脉、皮下、腹腔注射,换算比例应适当减小些。 < 1 > < 2 >
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