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    真核转染

    磷酸钙共沉淀法、电穿孔法、病毒载体,以及阳离子脂质体介导转染法。进行真核转染的一般程序:克隆目的基因(经测序验证)-准备真核表达载体-将目的基因插入表达载体中-转染-筛选-鉴定下面以pcDNA3为载体,p16为目的基因,介绍真核转染的实验操作。一、试剂准备1、HBS(Hepes-buffered saline):876mg NaCl溶于90ml ddH2O,加入1M Hepes,调pH到7.4,补ddH2O至100ml, pH7.4,滤过除菌。2、核酸贮存液,过滤除菌。3、培养基:含血清或不含血清的,用于转染细胞的正常培养。二、操作步骤(一)克隆目的基因1、根据GenBank检索的目的基因序列,设计扩增引物,并在上、下游引物的5’-端分别引入酶切位点BamHⅠ和XhoⅠ,行RT-PCR。2、回收特异性扩增片段,连入T载体。3、转化DH5α,质粒制备。4、酶切初步鉴定,测序证实。(二) 真核重组表达载体的构建:pcDNA3载体带有在大肠杆菌中复制的原核序列、便于挑选带重组质粒细菌的抗生素抗性基因,以及表达外源DNA序列所必需的所有真核表达组件。重组质粒与pcDNA3分别用BamHⅠ和XhoⅠ双酶切回收插入片段和pcDNA3线性片段T4连接酶连接转化DH5α质粒制备BamHⅠ和XhoⅠ双酶切鉴定。(三)重组pcDNA3转染SHG-44细胞:1、 G418筛选浓度测定:SHG-44培养于24孔培养板→G418 分别用100mg/L、200mg/L、300mg/L、400mg/L、500mg/L、600mg/L加入,各浓度3复孔,设正常对照3复孔。以10-14天细胞全部死亡的浓度为筛选浓度,结果为200mg/L。2、 在转染实验前天接种细胞,各种细胞的平板密度依据各种细胞的生长率和细胞形状而定。进行转染当天细胞应达到60%-80%覆盖。一般要求,6孔培养皿(35mm),每孔1-2ml培养基3×105细胞。依据不同大小培养板调整每平方厘米的细胞数量。典型贴壁细胞平板密度 培养板大小 生长面积(cm2) 大约细胞数 培养基容积(ml) 组织培养皿(φ60mm) 28 6.6*105 5-6 6孔培养板(φ35mm) 9.5 3*105 1-2 12孔培养板φ22.6mm) 4 1.3*105 0.5-1 24孔培养板(φ8mm) 0.5 0.6*105 0.25-0.5 3、 SHG-44细胞的转染:(1) 转染当天,加入脂质体/ DNA混合物之前的短时间内,更换1ml新鲜的有血清或无血清培养基。(2) 准备不同比例的DOSPER/ DNA混合物,以确定每个细胞系的最佳比例。① 溶液A:用HBS稀释DNA(pcDNA3、重组pcDNA3)各1.5μg 到总体积50μl(30μg/ml)。②溶液B:用HBS稀释6μl脂质体到终容积50μl(120μg/ml)。③混合溶液A和B,轻柔混合(不要振荡),室温孵育15min,以便脂质体/DNA混合物形成。(3) 不要移去培养基,逐滴加入100μl 脂质体/DNA混合物(从培养孔一边到另一边),边加边轻摇培养板。(4) 37℃孵育6hr。(5) 6hr后更换转染培养基,加入2-3ml新鲜生长培养基。(6) 转染24hr后施加筛选压力,改用含G418的培养基培养。4、 G418筛选:在G418筛选浓度下持续培养14天后,挑出单克隆,扩大培养,同时转染pcDNA3即SHG-44-vect,并设对照组细胞即SHG-44。(一)筛选结果鉴定:(1)基因组DNA提取→PCR鉴定外源基因(2)SHG-44-重组pcDNA3阳性细胞、SHG-44-vect裂解→聚丙烯酰胺凝胶电泳→免疫印迹鉴定P16蛋白表达(Westernblot)。(3)测定外源性基因对SHG-44细胞增殖的影响①流式细胞仪分析:SHG-44、SHG-44-vect、SHG-44-重组pcDNA3→单细胞悬液→70%酒精固定→裂解细胞→核糖核酸酶消化→碘化丙啶染色→上机分析G1期和G2/M、S期比例。②细胞生长曲线测定:SHG-44、SHG-44-vect、SHG-44-重组pcDNA3→5×104/孔接种24孔培养板→24hr后各自用苔盼蓝染色计数细胞→计算细胞生长抑制百分率。③软琼脂克隆形成率分析:SHG-44、SHG-44-vect、SHG-44-重组pcDNA3→104 细胞→0.3%低熔点琼脂糖培养→1-2周后计数不可少于50个细胞的克隆数→计算克隆形成率抑制率。三、注意事项1、优化转染条件(脂质体的用量、DNA密度、细胞密度、脂质体和DNA混合孵育时间)每种细胞和质粒均须进行。用于转染的核酸应高度纯化。为避免微生物污染,所用溶液滤过灭菌,以及随后的使用应在无菌条件下,这是细胞惯常的做法。但是,脂质体以及脂质体/ DNA混合物无需滤过除菌。2、预备脂质体/DNA混合物必须在无血清下进行。但是在随后的脂质体/ DNA与被转染细胞共孵育的过程中,血清又是培养基的一部分。3、在转染之前更换培养基,可提高转染效率,但所用培养基必须37℃预温。脂质体/ DNA混合物应当逐滴加入,尽可能保持一致,从培养皿一边到另一边,边加入边轻摇培养皿,以确保均匀分布和避免局部高浓度。
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